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脂质体的制备方法及其研究进展

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时珍国医国药2008年第19卷第7期LISHIZHENMEDICINEANDMATERIAMEDICARESEARCH2008VOL.19NO.7

[2] 江苏新医学院.中药大辞典,上册[M].上海:上海人民出版社,1997:181.

[3] 何明焕,邱荣梁,戴保安,等.广豆根抗癌成分苦参碱注射剂的研究

[J].中成药研究,1981,3:36.[4] 陆善旦.山豆根缘何销势不断看好[J].中药经济与信息,2004,8:2.

[5] 宋#唐慎微.重修政和经史证类备用本草[M].北京:人民卫生出版社影印,1982:276.

[6] 谢宗万.中药材品种论述,上册[M].上海:上海科学技术出版社,1990:142.

[7] 国家中医药管理局,中华本草编委会.中华本草,四部[M].上海:

上海科学技术出版社,1999:652.[8] 覃文流,凌征柱,吴庆华,等.山豆根野生变家种研究[J].时珍国医国药,2006,17(9):1668.

[9] 凌征柱,覃文流,赵维合,等.山豆根扦插繁殖[J].中药材,2005,28(9):750.

[10] 覃文流,凌征柱,许鸿源,等.山豆根组织培养获得再生植株[J].中

国中药杂志,2005,30(4):303.[11] 黄亚非,黄际薇,陶 铃,等.广西不同产地山豆根的指纹图谱特征

研究[J].中药材,2004,28(1):21.

[12] 覃文流,凌征柱,许鸿源,等.广豆根组培苗与野生植株有效成分的对比分析[J].中药材,2004,27(8):552.

[13] 杨东爱,覃文流,凌征柱,等.栽培山豆根与野生山豆根药材质量比

较[J].时珍国医国药,2006,17(3):479.[14] 黄燮才.中药广豆根(山豆根)原植物的研究[J].植物分类学报,1984,22(6):486.[15] 姚仲青,朱 虹,王光凤,等.山豆根总生物碱抗肿瘤作用的初步研究[J].南京中医药大学学报,2005,21(4):253.

[16] 肖正明,宋景贵,徐朝晖.山豆根水提物对体外培养人肝癌细胞增殖及代谢的影响[J].山东中医药大学学报,2000,24(1):62.

[17] 赵培荣,田爱琴,马湘玲,等.山豆根对人食道癌细胞株(Eca-109)

杀伤抑制及脱氢酶类的影响[J].河南肿瘤学杂志,1998,11(2):87.

[18] 丁凤荣,卢 炜,邱世翠.山豆根体外抑菌作用研究[J].时珍国医

国药,2002,13(6):335[19] 谢瑞金,唐启令,申庆亮,等.复方山豆根口服液镇痛消炎作用药理研究[J].时珍国医国药,1999,10(10):728.

5 药理作用

5.1 抗肿瘤作用姚仲青等[15]报道,在山豆根的总生物碱抗肿瘤作用研究中,通过建立小鼠S180,H22,ESC肿瘤模型,从整体水平上观察山豆根总生物碱对肿瘤生长的影响,结果山豆根总生物碱有一定的抗肿瘤活性,但抑瘤率低、毒性大。肖正民等[16]报道中药山豆根(SSCC)提取物以不同的时间处理人肝癌SMMC-7721细胞,用噻唑蓝(MTT)法测SSCC提取物对人肝癌细胞线粒体活性的影响,以细胞记数法观察其对细胞增殖的影响,结果显示:¹经SSCC提取物处理48h,其A570光吸收降为对照组的62.1%,72h为9.%;ºSSCC提取物处理7d后,人肝癌细胞数明显低于对照组;»SSCC提取物处理24h后,在更换为正常培养基恢复培养过程中,细胞数呈现缓慢生长;¼SSCC提取物作用24h后,人肝癌细胞有效指数分别为小牛血清(FCS)对照组的50.6%和无FCS对照组的69.7%。河南医科大学报道[17],应用杀伤效应、酶活性测定及Fulgen-DNA法显示指数,分析山豆根对体外培养人食管癌细胞株(Eca-109)的作用,结果表明100,200mg/ml浓度对细胞的杀伤能力随药物作用时间延长而增强,50mg/ml浓度维持在3%左右。100,200mg/ml实验,在加药第3天对细胞指数抑制率接近或达到100%,山豆根水提物能使谷氨酸脱氢酶、苹果酸脱氢酶和乳酸脱氢酶活性下降,直至阴性反应。

5.2 体外抑菌作用丁凤荣等[18]报道,用K-B纸片扩散法,100%山豆根浸出液滤纸片对大肠杆菌、金黄色葡萄球菌、白色葡萄球菌、甲型链球菌、乙型链球菌抑菌作用进行研究。结果山豆根对以上细菌均有明显抑菌作用。尤其对甲型链球菌、乙型链球菌抑菌效果更明显。

5.3 消炎镇痛作用谢瑞金等[19]用小鼠为实验对象,口服法给药,以醋酸所致扭体反应为镇痛指标,二甲苯所致耳廓肿胀为消炎指标,研究复方山豆根口服液治疗咽炎的药效学作用,结果表明,大中小剂量组均有镇痛作用,大剂量组与消炎组相当,各剂量组均有明显的消炎镇痛作用。

参考文献:

[1] 国家药典委员会.中国药典,Ñ部[S].北京:化学工业出版社,

2005:19.

脂质体的制备方法及其研究进展

穆筱梅,梁世强

(仲恺农业技术学院,广东广州 510225)

摘要:介绍了目前常用脂质体的两大类制备方法:被动载药法和主动载药法,并对其优缺点进行比较。被动载药法适

于脂溶性强的药物,包封率高且不易泄露;而主动载药法适于两亲性药物。

关键词:脂质体; 被动载药; 主动载药

中图分类号:TQ658 文献标识码:B 文章编号:1008-0805(2008)07-1784-03

脂质体作为药物载体具有提高药物疗效、减轻药物不良反应及靶向作用的特点。三十多年来,人们就其制备方法进行了大量的研究。脂质体是由磷脂分子在水相中通过疏水作用形成的,因此制备脂质体所强调的不是膜组装,而是如何形成适当大小、包封率高和稳定性高的囊泡。制备的方法不同,脂质体的粒径可从几十纳米到几微米,并且结构也不尽相同。目前,制备脂质体的

收稿日期:2007-07-10; 修订日期:2007-12-17作者简介:穆筱梅(1973-),女(汉族),甘肃天水人,现任仲恺农业技术学院讲师,博士学位,主要从事脂质体研究工作.

方法较多,常用的有薄膜法、反相蒸发法、溶剂注入法和复乳法

等,这些方法一般称为被动载药法,而pH梯度法,硫酸铵梯度法一般被称为主动载药法。1 被动载药法

脂质体常用制备方法主要有薄膜分散法、反相蒸发法、注入法、超声波分散等。在制备含药脂质体时,首先将药物溶于水相或有机相中,然后按适宜的方法制备含药脂质体,该法适于脂溶性强的药物,所得脂质体具有较高包封率。

1.1 薄膜分散法此法最初由Bangham等报道,是最原始但又是迄今为止最基本和应用最广泛的脂质体的制备方法。将磷脂和

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LISHIZHENMEDICINEANDMATERIAMEDICARESEARCH2008VOL.19NO.7时珍国医国药2008年第19卷第7期

胆固醇等类脂及脂溶性药物溶于有机溶剂,然后将此溶液置于一大的圆底烧瓶中,再旋转减压蒸干,磷脂在烧瓶内壁上会形成一层很薄的膜,然后加入一定量的缓冲溶液,充分振荡烧瓶使脂质膜水化脱落,即可得到脂质体。这种方法对水溶性药物可获得较高的包封率,但是脂质体粒径在0.2~5Lm之间,可通过超声波仪处理或者通过挤压使脂质体通过固定粒径的聚碳酸酯膜,在一定程度上降低脂质体的粒径。1.2 超声分散法将磷脂、胆固醇和待包封药物一起溶解于有机溶剂中,混合均匀后旋转蒸发去除有机溶剂,将剩下的溶液再经超声波处理,分离即得脂质体。超声波法可分为两种/水浴超声波法和探针超声波法0,本法是制备小脂质体的常用方法,但是超声波易引起药物的降解问题。

1.3 冷冻干燥法脂质体混悬液在贮存期间易发生聚集、融合及药物渗漏,且磷脂易氧化、水解,难以满足药物制剂稳定性的要求。1978年Vanleberghe等首次报道采用冷冻干燥法提高脂质体的贮存稳定性。目前,该法已成为较有前途的改善脂质剂长期稳定性的方法之一。

脂质体冷冻干燥包括预冻、初步干燥及二次干燥3个过程。冻干脂质体可直接作为固体剂型,如喷雾剂使用,也可用水或其它溶剂化重建成脂质体混悬液使用,但预冻、干燥和复水等过程均不利于脂质体结构和功能的稳定。如在冻干前加入适宜的冻干保护剂,采用适当的工艺,则可大大减轻甚至消除冻干过程对脂质体的破坏,复水后脂质体的形态、粒径及包封率等均无显著变化。单糖、二糖、寡聚糖、多糖、多元醇及其他水溶性高分子物质都可以用做脂质体冻干保护剂,其中二糖是研究最多也是最有效的,常用的有海藻糖、麦芽糖、蔗糖及乳糖。本法适于热敏型药物前体脂质体的制备,但成本较高。陈建明等[1]以大豆磷脂为膜材,以甘露醇为冻干保护剂,采用冻干法制备了维生素A前体脂质体,复水化后平均粒径为0.6151Lm,包封率98.5%。林中方等[2]采用冻干法制备了鬼臼毒素体脂质体,复水化后平均粒径为1.451Lm,包封率72.3%,但是这种方法仍然存在着不足之处,例如脂质体复水化后粒径分布不够均匀。

1.4 冻融法此法首先制备包封有药物的脂质体,然后冷冻。在快速冷冻过程中,由于冰晶的形成,使形成的脂质体膜破裂,冰晶的片层与破碎的膜同时存在,此状态不稳定,在缓慢融化过程中,暴露出的脂膜互相融合重新形成脂质体。何文等[3]分别用反相蒸发法、乳化法和冻融法制备了甲氧沙林脂质体。通过研究发现,冻融法制备的脂质体的包封率最高,但是粒径最大。反复冻融可以提高脂质体的包封率,王健松[4]制备了阿奇霉素脂质体,实验发现,经3次重复冻融后,阿奇霉素脂质体的包封率从61.4%增加到78%,但是当冻融次数增加到4次,包封率变化很小。该制备方法适于较大量的生产,尤其对不稳定的药物最适合。1.5 复乳法此法第1步将磷脂溶于有机溶剂,加入待包封药物的溶液,乳化得到W/O初乳,第2步将初乳加入到10倍体积的水中混合,乳化得到W/O/W乳液,然后在一定温度下去除有机溶剂即可得到脂质体。Kim[5]用乳化法制得脂质体的包封率比较高,但是粒径较大。Tomoko等[6]通过研究发现,第2步乳化过程和有机溶剂的去除过程的温度对脂质体的粒径有比较大的影响,较低的温度有利于减小脂质体的粒径,通过控制温度可以制得粒径为400nm,包封率达到90%的脂质体。

1.6 注入法将类脂质和脂溶性药物溶于有机溶剂中(油相),然后把油相均速注射到水相(含水溶性药物)中,搅拌挥尽有机溶剂,再乳匀或超声得到脂质体。根据溶剂的不同可分为乙醇注入法和乙醚注入法。

乙醇注入法避免了使用有机溶剂,丁丽燕[5]用乙醇法制备了司帕沙星脂质体,通过研究发现慢速注入可制得具有较高包封率的脂质体,其包封率为47%。乙醚注入法制备的脂质体大多为单室脂质体,粒径绝大多数在2Lm以下,操作过程中温度比较低(40e),因此,该方法适用于在乙醚中有较好溶解度和对热不稳定药物,同时通过调节乙醚中不同磷脂的浓度,可以得到不同粒径且粒径分布均匀的脂质体混悬液[8]。

1.7 反相蒸发法最初由Szoka提出,一般的制法是将磷脂等膜材溶于有机溶剂中,短时超声振荡,直至形成稳定的W/O乳液,然后减压蒸发除掉有机溶剂,达到胶态后,滴加缓冲液,旋转蒸发使器壁上的凝胶脱落,然后在减压下继续蒸发,制得水性混悬液,除去未包入的药物,即得大单层脂质体脂质体。此法可包裹较大的水容积,一般适用于包封水溶性药物、大分子生物活性物质等。1.8 超临界法传统的脂质备方法,必须要使用氯仿,乙醚、甲醇等有机溶剂,这对环境和人体都是有害的。超临界二氧化碳是一种无毒、惰性且对环境无害的反应介质。严宾等[9]用超临界法制备了头孢唑林钠脂质体,将一定量的卵磷脂溶解于乙醇中配得卵磷酯乙醇溶液,与头孢唑啉钠溶液一起放入加入高压釜中,将高压釜放入恒温水浴中,通入CO2。在其超临界态下孵化30min,制备脂质体。采用超临界CO2法制备的包封率高、粒径小,稳定性增强。2 主动载药

对于两亲性药物,如某些弱酸弱碱,其油水分配系数介质pH和离子强度的影响较大,用被动载药法制得的脂质体包封率低。

主动载药是利用两亲性的药物,能以电中性的形式跨越脂质双层,但其电离形式却不能跨越的原理来实现的。通过形成脂质体膜内、外水相的pH梯度差异,使脂质体外水相的药物自发地向脂质体内部聚集。

此法通常用脂质体包封酸性缓冲盐,然后用碱把外水相调成中性,建立脂质体内外的pH梯度。药物在外水相的pH环境下以亲脂性的中性形式存在,能够透过脂质体双层膜。而在脂质体内水相中药物被质子化转为离子形式,不能再通过脂质体双层回到外水相,因而被包封在脂质体中。主动载药法广义上就是指pH梯度法。人们把其细分为:(1)pH梯度法;(2)硫酸铵梯度法;(3)醋酸钙梯度法。其中硫酸铵梯度法和醋酸钙梯度法只是pH梯度法的两种特殊形式。2.1 pH梯度法pH梯度法通过调节脂质体内外水相的pH值,形成一定的pH梯度差,弱酸或弱碱药物则顺着pH梯度,以分子形式跨越磷脂膜而使以离子形式被包封在内水相中。

赵妍等[10]用以pH梯度法制备硫酸长春新碱脂质体,其包封率大于85%,而被动载药法制备的硫酸长春新碱脂质体的包封率最高为14.4%。Jia等[11]用pH梯度法内水相pH0.5%外水相pH4.0制备了卡苯达唑脂质体,包封率高于95%。杜松等[12]用pH梯度法制备盐酸去氢骆驼蓬碱脂质体,包封率大于80%,研究表明,虽然制得的脂质体没有加强药物的抗癌活性,但是大大降低了其毒副作用。

跨膜pH梯度是影响包封率的最主要因素,通常pH梯度越大,载入脂质体内的药物越多,包封率也越高。制备伊立替康脂质体时[13],当pH梯度\\3.7时包封率达97%以上,当pH梯度<2时,包封率不到5%;Mamyer等[14]在研究中发现通过跨膜pH梯度法制备多柔比星脂质体,pH梯度达到3.5时包封率达98%,降低内水相缓冲液的pH可增大pH梯度,但会加剧磷脂的水解,降低脂质体的稳定性。

此外,药物自身性质如油水分配系数、膜渗透性等亦可影响

[15]

包封率。Quan等用pH梯度法制备多巴胺脂质体,由于多巴胺亲水性较强,无法直接克服能量壁垒穿过脂质双分子层进入内水相,但与拉沙洛西(lasalocid)结合形成复合物可暴露出亲脂性表面,即可穿过脂质膜进入脂质体,包封率提高到85%。氧化苦参碱水溶性较大,脂溶性较弱,因此采用pH梯度法制备脂质体

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时珍国医国药2008年第19卷第7期LISHIZHENMEDICINEANDMATERIAMEDICARESEARCH2008VOL.19NO.7

质体的研制及特性观察[J].第一军医大学学报,2004,24(7):784.[3] 何 文,夏 晶.制备方法对甲氧沙林脂质体体外性质的影响研究

[J].广东药学院学报,2005,6:661.

[4] 王健松,朱家壁.阿奇霉素脂质体的制备及其包封率测定[J].中国药科大学学报,2004,35(6):499.[5] KimS,MartinGM.Preparationofcell-sizeunilamellarliposomeswith

highcapturedvolumeanddefinedsizedistribution[J].BiochimBio-physActa,1983,728:339.

[6] TomokoNi,iAkiraTakamura,KiminoriMohr,ieta.lFcatorsaffecting

physicochemicalpropertiseofliposomespreparedwithhydrogenatedpu-rifideeggyolklecithinsbythemicroencapsulationvesiclesmethod[J].

colloidaandSurfacesB:Biointerfaces,2002:323.

[7] 丁丽燕,杨 春,李学明,等.乙醇注入法制备司帕沙星脂质体[J].南京工业大学学报,2007,1:32.

[8] 王健松,朱家壁.乙醚注入法制备阿奇霉素脂体[J].中国药学杂志,2005,6:876.

[9] 严 宾,安学勤,白 晶,等.超临界CO2法制备头孢唑啉钠脂质体

[J].物理化学学报,2006,2:226.[10] 赵 妍,于 彬,邓意辉卜,等.主动载药法制备硫酸长春新碱脂质体及其包封率的测定[J].中国药学杂志,2005,10:1559.[11] JiaL,GarzaM,WongH,eta.lPharmacokonetiecomparisonofintrave-nouscarbendazimandremoteloadedcarbendazimlipesomesinnude

mice[J].JPharmBiomedAna,l2002,28(1):65.

[12] 杜 松,邓英杰,张 威.主动载药法制备盐酸去氢骆驼蓬碱脂质体[J].中草药,2005,5:673.[13] ChouTH,ChenSC,ChuIM.Effectofcompositiononthestabilityofl-iposomalirinotecanpreparedbyapHgradientmethod[J].JBiosciBio-eng,2003,95(4):405.

[14] MayerLD,TaiLCL,BallyMB,tea.lCharacterizationofliposomalsystemcontainingdoxorubicinentrappdeinresponsetopHgradients[J].Bio-chimBiophysActa,1990,1025(2):143.[15] Quanz,SugawaraM,UmezawaY.Lasalocid.Afacilitateddopamineup-hilltransportandconcentrationintoliposomesdrivenbypHgradient

generatedbybacteriorhodopsinunderillumination[J].BiosensBioelec-tron,1998,13(11):1157.

[16] 郑庆忠,刘利军.pH梯度法制备氧化苦参碱脂质体[J].中国医药工业杂志,2006,37:679.

[17] 刘陶世,蔡宝昌,赵新慧,等.硫酸铵梯度法结合微滤挤出制备马钱子碱脂质体的研究[J].中成药,2005,11:1247.

[18] 黄 园,段逸松.硫酸铵梯度法制备米托蒽醌脂质体[J].中国药学

杂志,2002,12:917.[19] PanXQ,WangH,ShuklaS,eta.lBoron-containingfolatereceptortar-getedliposomesaspotentialdeliveryagentsforneutroncapturetherapy[J].BioconjugateChem,2002,13:435.[20] WongJP,YangH,BlasettiKL,eta.lLiposomedeliveryofciprofloxacin

againstintracellularFrancisellatularensisinfectin[J].JControlled,2003,92(3):265.

[21] ClercS,BareubolzY.Loadingofamphipathicweakacidsintolipo-somesinresponsetotransmembranecalciumacetategradients[J].Bio-chimBiophysActa,1995,1240:257.[22] HwangSH,MaitaniY.Remoteloadingofdiclofenac,insulinandfluo-resceinisothiocyanatelabeledinsulinintoliposomesbypHandacetate

gradientmethods[J]Int.J.Pharm,1999,179:85.

包封率只有50%[16]。

2.2 硫酸铵梯度法硫酸铵梯度法通过游离氨扩散到脂质体外,间接形成pH梯度,使药物积聚到脂质体内。其方法为先将硫酸铵包与脂质体内水相,然后通过透析、凝胶色谱或超滤的方法除去脂质体外水相的硫酸铵。由于离子对双分子层渗透系数的不同,氨分子渗透系数(0.13cm/s)较高,能很快扩散到外水相中;H+的渗透系数远小于氨分子,因此会使脂质体内水相呈酸性,形成pH梯度,梯度大小由[NH4+]外水相/[NH4+]内水相比较决定,这样使药物逆硫酸铵梯度载入脂质体。药物与SO42-形成的硫酸盐,对双分子层有很低渗透系数,因而使药物具有很高的包封率。

刘陶世等[17]采用硫酸铵梯度法制备马钱子碱脂质体,0.1mol/L硫酸铵水溶液的用量为大豆卵磷脂的66.7倍,制得的马钱子碱脂质体包封率在90%以上。米托恩醌以注入法或反相蒸发法制备的脂质体,包封率较低,但是其为弱碱性蒽醌类药物,易与硫酸根离子形成溶解性更小的硫酸盐,黄园[18]用硫酸铵梯度法制备米托蒽醌脂质体的平均粒径均在60nm左右,包封率为93.65%。Pan等[19]用不同的主动载药法制备了5种多铵硼酸盐脂质体,得到较高的包封率仅为6%和15%。研究表明,用硫酸铵梯度法制备的脂质体包封率要高于枸橼酸盐pH梯度法制得的脂质体。Wong等[20]用此法制备了环丙沙星单室脂质体,包封率为90%。

相比较于pH梯度法,硫酸铵梯度法不需要改变外水相的pH值,控制梯度也易实现,整个过程无需缓冲液或pH滴定,内水相只有pH梯度法更有利于脂质体的稳定。

2.3 醋酸钙梯度法醋酸钙梯度法通过醋酸钙的跨膜运动产生的醋酸钙浓度梯度(内部的浓度高于外部),使得大量质子从脂质体内部转运到外部产生pH梯度。醋酸的渗透参数(6.6@10-4cm#s-1)比Ca2+(2.5@10-11cm#s-1)大7个数量级,所以很少穿越双分子膜留在脂质体内部,醋酸分子则参与了质子转运。醋酸钙跨膜运动产生的浓度梯度(内部的浓度高于外部)导致大量质子从脂质体的内部转运到外部产生pH梯度,而pH的不平衡为包载和聚集弱碱药物提供了高效驱动力。因此,在这基础上应用醋酸钙梯度法把弱酸药物萘啶酸包载入预制备好的空白脂质体中[21],包封率约99%,在4e下存放10个月均稳定未见泄露。Hwang等[22]也用此法制备了双氯芬酸钠脂质体,包封率约100%,而传统的逆相蒸发法只有1%~8%。3 结语

脂质体作为一种新型的药物传递系统正越来越被人们重视。评价脂质体质量的指标有外观、粒径分布和包封率等,其中包封率是衡量脂质体内在质量的一个重要指标。制备方法的不同,脂质体的粒径、结构以及包封率都不尽相同。被动载药法适于脂溶性的药物,包封率高且不易泄露。而主动载药法适于两亲性药物,其包封率一般>80%,开启了制备高包封率水溶性药物脂质体的新思路。

参考文献:

[1] 陈建明,张仰眉,高申,等.维生素A前体脂质体的研制及其特性考

察[J].第二军医大学学报,2003,24(2):207.[2] 林中方,曾 抗,周再高,等.鬼臼毒素二棕榈酰磷脂酰胆碱前体脂

#1786#

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