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高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素a

来源:花图问答
DOI:10.12161/j.issn.1005-6521.2020.06.021

118圆园20年3月

第41卷第6期

云oodResearchAndDevelopment食品研究与开发检测分析

高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和

赭曲霉毒素A

2,32,32,32,32,352,32,3,*

李克1,,潘丽红1,,罗小虎1,,王莉1,,王韧1,,邢家溧4,,杜志红1,,孙冬玲6,陈正行1,(1.江南大学食品科学与技术国家重点实验室,江苏无锡214122;2.江南大学粮食发酵工艺与技术国家工程实验室,江苏无锡214122;3.江南大学食品学院,江苏无锡214122;4.宁波市食品检验检测研究

院,浙江宁波315048;5.宁波大学海洋学院,浙江宁波315211;6.无锡爱邦辐照技术有限公司,

江苏无锡214151)

要:该研究开发一种快速、灵敏同时检测玉米、小麦和稻米中玉米赤霉烯酮(zearalenone,ZEN)和赭曲霉毒素A

将样品采用乙腈/水(ochratoxinA,OTA)的高效液相色谱检测方法。(80/20,体积比),200r/min,30益振荡提取30min该方法ZEN和OTA检测限(limitofdetection,后,经OasisPRiMEHLB固相萃取柱净化后,上样检测。LOD)为3.7滋g/kg(quantificationLimit,和0.11滋g/kg,定量限LOQ)为12.25滋g/kg和0.38滋g/kg,线性范围分别为10滋g/kg~2000滋g/kg和0.2滋g/kg~200滋g/kg,加标样品中不同浓度的ZEN和OTA回收率为83.0%~101.3%,日内精密度和日间精密度分别小麦和稻米中ZEN和OTA的同时检测。为3.12%~7.03%和3.57%~9.3%。该方法适用于玉米、关键词:玉米赤霉烯酮;赭曲霉毒素A;高效液相色谱;检测;谷物

SimultaneousDeterminationofOchratoxinAandZearalenoneinCerealsbyHPLC

2,32,32,32,32,3

,PANLi-hong1,,LUOXiao-hu1,,WANGLi1,,WANGRen1,,LIKe1,52,32,3,*

XINGJia-li4,,DUZhi-hong1,,SUNDong-ling6,CHENZheng-xing1,China;2.NationalEngineeringLaboratoryforCerealFermentationTechnology,JiangnanUniversity,Wuxi

(1.StateKeyLaboratoryofFoodScienceandTechnology,JiangnanUniversity,Wuxi214122,Jiangsu,

Science,NingboUniversity,Ningbo315211,Zhejiang,China;6.WuxiELPONTRadiationTechnologyCO.,粤遭泽贼则葬糟贼:AsensitiveandrapidmethodhadbeendevelopedforthesimultaneousdeterminationofochratoxinA(OTA)andzearalenone(ZEN)incorn,wheatandricebyhighperformanceliquidchromatography(HPLC).Afterextractionwithacetonitrileandwater(80/20,volumeratio)for30minunder30毅Cand200r/mininarotaryshaker,thecerealsampleswerepurifiedusingOasisPRiMEHLBcartridge.ThelimitsofdetectionandquantificationofthemycotoxinsweredeterminedundertheoptimumHPLCconditionsat3.7滋g/kgand

Ltd.,Wuxi214151,Zhejiang,China)

Jiangsu,China;4.NingboInstituteforFoodControl,Ningbo315048,Zhejiang,China;5.SchoolofMarine

214122,Jiangsu,China;3.SchoolofFoodScienceandTechnology,JiangnanUniversity,Wuxi214122,

12.25滋g/kgforZENand0.11滋g/kgand0.38滋g/kgforOTA,respectively.Highcorrelationcoefficients(R2>0.99)wereobtainedintherangeof10滋g/kg-2000滋g/kgforZENand0.2滋g/kg-200滋g/kgforOTA.Theaveragerecoveriesrangedfrom83.0%to101.3%fordifferentconcentrationsofZENandOTAinspikedsamplesalongwithgoodintra-day(3.12%-7.03%)andinter-day(3.57%-9.3%)precision.Themethod

基金项目:江苏省农业科技自主创新项目[CX(17)1003];“十三五”国家重点研发计划(2017YFC1600904);现代农业产业技术体系建设专项资金(CARS-02-32)(LQ2018302)资助;全国粮食行业青年拔尖人才项目李克(1993—)食品质量与安全。作者简介:,男(汉),硕士研究生,研究方向:陈正行(1960—)博士。*通信作者:,男,教授,博士生导师,

检测分析

李克,等:高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A

proposedissuitableforthesimultaneousdeterminationofZENandOTAandcanbeperformedforthemycotoxin运藻赠憎燥则凿泽:zearalenone;ochratoxinA;highperformanceliquidchromatography;determination;cereal

引文格式:

李克,潘丽红,罗小虎,等.高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A[J].食品研究与开发,2020,41(6):118-123

LIKe,PANLihong,LUOXiaohu,etal.SimultaneousDeterminationofOchratoxinAandZearalenoneinCerealsbyHPLC[J].

119analysisincorn,wheatandrice.

FoodResearchandDevelopment,2020,41(6):118-123

真菌毒素是真菌产生的二次代谢产物,在农作物收获过程中广泛存在。由于其对动物和人体的严重危害,真菌毒素在谷物中的污染已成为全球饲料和食品安全问题关注焦点[1-4]。在众多真菌毒素中,由Asperg-ZENillus和Penicillium分泌的玉米赤霉烯酮

(zearalenone,OTA)大麦)和、在玉米植Fusarium物、燕来麦源、食品分泌小麦真的等菌赭[5-6]毒曲。素霉毒ZEN污染素可中A导致占(ochratoxin重雌要激比素重,A效应如,,扰乱动物的生殖系统[7]。OTA已被国际肿瘤研究机构InternationalAgencyforResearchonCancer,IARC)认定为潜在致癌物[8]。中国和欧盟对ZEN和OTA在人可直接消费谷物中的限量分别为50、60、5、75滋g/kg,以保障食品安全[9-10]。

近年来,相继有研究报道了真菌毒素在谷物和谷物制品中的共污染现象,其中ZEN和OTA的共污染占有较大比重,引起研究者的重视,对其联合毒性和OTA相互单作一用机毒性制相进比行,了二探者讨[11-14]联合。研究毒性呈表显著明,拮与抗ZEN效应和。和HalabiOTA等基的单于一和动物联学合实毒验性,,混从和病毒理学素在角大部度阐分明指标上了ZEN呈现ZEN出和拮OTA抗效的应[15]联合。毒Wang性,结果显等采用示HepG2出二者细的胞拮研究抗效了与时间和浓度相关[16]。为应对ZEN和OTA在谷物中的应共污染,亟需一种快速、高灵敏度和准确度的同时检测方法。

goldtechnique在过去十,年ICGT中,)免疫胶体金技术

(immunecolloidal[17-18]

,超高效液相色谱-电喷雾串

联trospray质谱法ionization(ultraperformanceliquidchromatography-elec原

MS)[19-20]

和高效液-mass相串联spectrometry离子阱质,谱UPLC法

(high-ESIperfor-MS/

mancetry,HPLC-ITMSliquidchromatography)已被用于ZEN-ion和trapOTAmass的spectrome同时检测原

然而,ICGT技术受限于。

ESI-MS/MS和HPLC-ITMS定量具和有高灵敏选度择问题性和,灵UHPLC-敏度的

同时,也面临相对复杂繁琐的操作步骤和昂贵的仪器设备manceliquidchromatography问题[21]。相比之下,高效液检测的实际可行性[22]。近年来,HPLC相,也有研究者)具色有谱实法验(报室high道真了菌perforHPLC毒素原在不同基质中真菌毒素同时检测中的应用。HEOK等采用HPLC柱后衍生对干辣椒和辣椒粉中的黄曲霉毒素、ZEN和OTA进行了检测,取得良好的分离效果和13.25定量结滋g/kg果,和定量0.45限(滋g/kgquantificationlimit,LOQ)分别为

[23]。Rahmani等也对黄曲霉毒素、ZEN和OTA在谷物中的同时检测做了大量方法学研究,尽管该方法具有更低的定量限,然而却需要更长的洗脱时间[24-26]。杜晶晶等将两种免疫亲和柱串联实现了ZEN和OTA在粮食中的同时检测,但存在成本高昂的缺陷[27]。黎睿等开发了同时检测粮食中8种常见真菌毒素的高效液相检测方法,但从色谱图中可知,部分毒素保留值过于接近,实际应用过程中可能出现分离效果不理想的问题[28]。李军等的方法则同时存在保留值过于接近和洗脱时间长的问题[29]。王向红OTA等报道的的同方时法检在测未,然采而用样净品化前处柱的理条件较复下杂,实,耗现时ZEN长,检和出限较高,分别为13滋g/kg和1.25滋g/kg且线性范围过窄,在实际污染谷物样品检测中应用可能受限[30]。

对于谷物中真菌毒素的痕量分析,样品制备过程必不可少,本研究尝试了不同比例的甲醇、乙腈和水的混合液作为提取溶剂以实现回收率的最大化;选择多功能净化柱和固相萃取柱用于萃取液的净化,筛选适宜的净化柱,并对HPLC检测条件进行了优化。旨在建立一种灵敏、

快速的HPLC同时检测玉米、小麦和稻米中ZEN和OTA的方法。1

1.1材料与方法

1.1.1材料ZEN材料与和与仪OTA试器

标准品、乙酸(色谱纯):纯度逸99.8%,

(李克,等:高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A

检测分析

120百er灵Scientific威科技有限公司;公司;试验甲醇用超、纯乙水腈(色谱纯):美国Fish原Millipore-QSP超纯水仪制备;(氮电气阻、逸氧18.2气(M赘纯/cm度)逸

:99.8纯):上海%):无国锡药新南化学化学试剂气有限公司;体有限公司;无毒其素他小麦试剂、

玉米(分析和稻1.1.2米:Romer主要仪labs器。设备

色谱柱HPLC:美国1260安捷伦型带公司;荧光MD200-1检测器、ZORBAX型氮吹仪SB:杭C18州奥型

Romer盛仪器labs有限公司。公司;OasisMycosepPRiME226HLB、22760多功能mg/3净mL化固柱相

:萃1.2取柱1.2.1试验:Waters将ZEN方ZEN和法

公司。溶于OTA甲醇标准溶储液备,OTA液和溶于工作乙液腈的溶配液制

,分别

配备成20滋g/mL的标准储备液,-20益保藏。取一定量10ZEN滋g/mL和的OTA标准标工作准储液备,4液益,保分藏别;分加别取入甲醇一定量,配置ZEN

成和OTA标准工作液,混合后用甲醇稀释为两者浓度分别为10滋g/kg~2000滋g/kg和0.2滋g/kg~200滋g/kg的毒1.2.2素混合未样工作污品染制备液,的玉米与4益和ZEN保藏小麦经和。

OTA磨粉的过同30时目提筛取

后,分别定

量加入ZEN和OTA标准工作液,使加标后的样品中所20含、两200种毒滋g/kg素终浓,随后度所分有别样为品20室、温200放、2置000过夜滋后g/kg待测和。0.5、

比)、4乙种腈不/水同(的提80/20取,溶体剂积,比包)括、乙甲醇腈//水水((84/1680/20,,体积

体积比)、乙腈/水/1%乙酸(79/20/1,体积比),被用于样品

中混和毒素的同时提取。不同提取时间和温度也被用于摇床振荡提取过程。

250优化后的样品提取净化方法:称取25g样品至

放入mL空锥气形恒瓶,加入100摇床mL,200乙腈r/min/水(80/20,30,益体积下振比)荡

,30滤后min的提,玉米取液样温5品振mL另需荡直加接过入4OasisgNaClPRiME。振荡HLB结束净,化取柱过,随50后膜益用下轻1mL柔氮乙吹腈至分干两次,流洗动脱相。复收溶集,过洗0.22脱液滋至m离针心孔管,1.2.3后用于高HPLC上样效液相检检色测测谱条件

。滤1260仪带G1312B荧光检测器,Agilent

填料直型径。色5谱滋m柱):。ZORBAX流动相组SB-aq成为色2谱%柱乙(酸4.6/乙伊150腈/甲醇mm,60/30/10,体积比),荧光检测器激发波长为325nm,

发1mL/min射波长,洗455脱时间nm,柱为温2530min益。,进样量50滋L,流速2

2.1结果与分析

以HPLC分离效条件优果和色化

谱峰形为指标,本研究对流动

相、柱温、流速和检测波长进行优化。不同比例的2%的乙酸(体积比)、乙腈和甲醇被用作流动相进行样品的洗脱。结果表明,当三者比例为60/30/10(体积比)时,分离效果最佳,色谱峰形最好。乙腈含量过高或过低均会导致色谱峰重叠或洗脱时间较长的问题。

当柱温从25益升到35益,样品洗脱明显加快,峰间距逐渐缩短。25益时,样品洗脱时间大于30min;

351益时,ZEN和OTA色谱谱000峰具滋有g/kg合和理的200峰滋间g/kg距,时峰且可存间在在距粘过窄,在浓度分别为25连min;30内益完时成,二洗者脱色过程。因此,选择30益为色谱检测的柱温。

在上述流动相和柱温条件下,将洗脱流速从

0.9形更mL/min尖锐,然升而至检1.1出mL/min峰面积却,洗呈脱下时间降趋进势一。步因缩此短,选,峰

合1.0理mL/min且峰面为最佳积处于可流速接受,此范时围色内谱。

峰形良好、洗脱时间

此外,由于ZEN和OTA色谱保留值较为接近,采

用分段设置检测波长的方法,可能导致样品检出时间过短的问题。因此,本研究参考已有研究[30],采用相同波长下检测两种毒素的方法,经测试,在激发波长325高的nm响应和值。

发射波长455nm时,ZEN和OTA均具有较优化后的最佳HPLC检测条件为:2%乙酸/乙腈/甲醇(1.0测mL/min60/30/10结果如,,体积比)为流动相,柱温30益,流速图激发1所波示长。

325nm,发射波长455nm,具体2.2检以样回品收提率取为指标,对谷物样品中加标毒素提取条

件进行优化,包括提取溶剂、温度和时间。同溶剂对加标玉米样品中ZEN和OTA的提取效果见表1。

如表1所示,4种不同的提取溶剂被用于加标玉米中ZEN(200滋g/kg)和OTA(20滋g/kg)的同时提取。结果表明,不同提取溶剂所得毒素回收率有显著差异p<0.05),当使用乙腈/水(80/20,体积比)作为提取溶剂时,所得回收率最高,ZEN和OTA回收率分别为92.1水/乙%酸和(79/20/1101%,,其次体积为比乙)尽腈管/水(对84/16ZEN,有体积较高比回)。收乙率腈,

/

((检测分析

李克,等:高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A

0.180.160.140.120.100.080.06

0

2

4

6

8

10

12

14

16ZEN

121OTA

时间/min

18202224

图1ZEN和OTA的标准品色谱图

Fig.1ChromatogramofZONandOTAinthereferencestandardsolutions

表1不同溶剂对加标玉米样品中ZEN和OTA的提取效果Table1Recoveries(Rec)ofZONandOTAinspikedcorn

samplesextractedbydifferentsolvents

回收率/%

90.5依3.17.2依1.0592.1依5.1285.4依3.4378.7依4.0188.3依2.22ZEN81.2依3.4191.2依2.01101.0依2.7382.1依2.3465.6依3.0281.7依4.20OTA表2不同提取条件下加标玉米样品中ZEN和OTA的提取效果Table2Recoveries(Rec)ofZONandOTAinspikedcorn

samplesunderdifferentextractionconditions

提取温度/益

25提取时间/min

453025

回收率/%

88.3依3.7697.1依2.3183.5依3.05ZEN69.7依5.41OTA提取溶剂(体积比)乙腈/水(90/10)乙腈/水(84/16)乙腈/水(80/20)乙腈/水/1%乙酸(79/20/1)

乙腈/水(75/25)甲醇/水(80/20)

25

25

81.5依4.13

30

303045

3025101.2依1.21.37依2.0290.2依2.87

72.7依1.

83.3依3.0192.3依0.57

75.1.依4.23甲醇/水但OTA回收效果较差。(80/20,体积比)对两种毒素的回收效果最差,与文献报道有较大差异,推测可能是由于其在样本制备阶段采用均质提取[25]。此外,甲醇/水(80/20,体积比)所得提取液中杂质含量最高,可能会对后续净化步骤有所干扰。

不同提取条件下加标玉米样品中ZEN和OTA的提取效果见表2。

提取温度和时间的优化结果如表2所示,采用乙腈/水(80/20,体积比)作为提取溶剂,当摇床温度为30益,振荡30min时,ZEN和OTA回收率最高,分别

12108200

2

4

6

8

10

12

空白样品

2.3提取液的净化

温度均会影响二者回收率,尤其是OTA。

3种净化柱被用于上述提取液的净化,包括My原

于其他Oasis固相萃取柱产品系列,具有操作更简单、除杂更彻底的优点。经Mycosep226和Mycosep227净化后的提取液中,ZEN和OTA两者之一或两者均存在回收率较低的问题,而采用OasisPRiMEHLB净化后,提取液中绝大部分杂质被去除,且ZEN和OTA检测效果良好,如图2所示。

PRiMEHLB是Waters新型反相固相萃取吸附剂,相较

cosep226、Mycosep227和OasisPRiMEHLB,其中Oasis

达到101.2%和92.3%。更长的提取时间和较低提取

ZEN

14

16

18

OTA

加标样品

20

22

24

时间/min

图2空白玉米样品和ZEN(200滋g/kg)、OTA(20滋g/kg)加标玉米样品的色谱图

Fig.2Chromatogramsofblankcornsampleandofasamplespikedwith200滋g/kgZONand20滋g/kgOTA

2.4方法验证

122李克,等:高效液相法同时检测谷物中玉米赤霉烯酮和赭曲霉毒素A

检测分析

如表3所示,本方法对于ZEN和OTA具有良好的线性,相关性系数R2值均大于0.99,线性范围分别为10滋g/kg~2000滋g/kg和0.2滋g/kg~200滋g/kg,ZEN

表3检测方法的LOD、LOQ和相关系数

Table3LOD,LOQandcorrelationcoefficientsformethodvalidation

检测方法的检测限(limitofdetection,LOD)、LOQ

和相关系数见表3。

检测物OTAZEN线性方程y=0.3611x+0.0112y=0.0101x+0.006R20.99770.9991线性范围(/滋g/kg)

10~20000.2~200LOD/(滋g/kg)

0.113.7LOQ/(滋g/kg)

12.250.38(LOD)和OTA的检出限分别为3.7滋g/kg和0.11滋g/kg,以3倍和10倍信噪比估计,与HEOK等的结果相近[23]。

加标玉米样品中ZEN和OTA检测的准确度和精密度见表4。

表4加标玉米样品中ZEN和OTA检测的准确度和精密度Table4Accuracyandprecisionformycotoxindeterminationin

spikedcornsamples

检测物ZEN加标浓度/

(滋g/kg)2000.52020准确度/%83.187.091.991.697.4

日内RSDr/%6.735.7.035.714.36

日间RSDR/%7.116.159.306.885.453.57LOQ分别为12.25滋g/kg和0.38滋g/kg,LOD和LOQ分别

检测结果如表5所示,本方法对两种加标谷物中的毒素均具有良好回收率和精密度,与Rahmani等的结论相似,不同基质未影响毒素回收率[26]。因此,本研究所开发的检测方法可用于谷物中ZEN和OTA的同时检测。3

结论

快速地同时检测玉本研究开发了一种可以灵敏、

米和小麦中ZEN和OTA的HPLC检测方法。该方法具有经济、设备要求合理的特点,对于玉米和小麦等常见的谷物均具有良好的回收率和精密度,日内精密度与日间精密度均小于9.3%,具有实际应用于实验室日常检测的可行性,有利于推动谷物质量安全建设。参考文献:

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productioninBavariancerealgrainsstoredat15and19%moisture1992,23(2):259-265

OTA

2000

200101.33.123d重复3次。两种毒素的准确度为83.1%~101.3%,(relativestandarddeviation-within-daypre原日内精密度

inter-dayprecision,RSDR)均小于9.3%。表5。

表5加标玉米和小麦中ZEN和OTA的检测效果Table5Meanrecoveries(Rec),standarddeviation(SD)and

relativestandarddeviation(RSD)forthesimultaneousdeterminationofZONandOTAincornandwheat

检测加标浓度/物(滋g/kg)ZEN20玉米回收率/%91.3.5标准偏差4.833.143.4.435.445.05RSD/%6.285.933.444.875.016.05回收率/%90.192.595.0.192.595.6小麦标准偏差4.343.013.114.075.125.73RSD/%5.2.224.535.105.346.34[5][4]

如表4所示,加标玉米样品的检测分别在不同的

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Journal3678

ofthedetectionScienceofofFoodochratoxinandAgriculture,Aandzearalenone2016,96(11):incereal[J].3673-[19]HUANGLiangce,ZHENGNan,ZHENGBaiqin,zearalenoneet123determinationofaflatoxinM-1,ochratoxinA,al.Simultaneous

pha-zearalenolandal原

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liquidchromatography-tandemDINGShuangyang,massspectrometryetal.Ultra-high-pressure

sixresorcylicacidlactonesinbovinemilk[J].JournalforoftheChromatoganalysis原

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andGrounddureRAHMANI,andforthesimultaneousSJINAP,FdeterminationSOLEIMANY.Validationoftheproce原

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G2,ochratoxinmethodforFAsimultaneousSOLEIMANY.andzearalenonedeterminationOptimizationusinganexperimenofandaflatoxinvali原

tal原

[26]Analysisdesign[J].AControlFoodExposureAdditives&RiskandAssessment,Contaminants2011,Part28(7):a-Chemistry902-912tionRAHMANI,validatedofaflatoxins,SJINAP,ochratoxinAKHATIB,a,etal.Simultaneousdetermina原

nal600-617

ofLiquidrp-hplcChromatographymethodand&phredandzearalenoneRelatedderivatizationinTechnologies,system[J].cerealsusing2013,36(5):Joura原[27]杜晶晶食中赭,曲王霉毒克超素,丁A勇和宝玉米,等.赤霉串联烯两酮种免疫[J].农产品亲和柱质同量时与检安全测粮

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测粮食中常见8种

[29]李军效液,相于一色谱茫法,田同时苗检,等测.粮免疫谷中亲的黄和柱曲净霉毒化-柱素后、玉米光化学赤霉衍烯生酮-高

和赭曲霉毒素A[J].色谱,2006,24(6):581-584

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中的赭曲

收稿日期:2019-03-20

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